1.染色結果不理想,細胞核發(fā)灰模糊,對比不鮮明。解決方法:①半小時內完成取材,組織離體后盡快固定;②固定液選擇視組織而定,有致密外膜用Carnoy液,活檢用Bouin液,固定液體積要超過組織體積5倍以上,量少應中途換液1~3次;③固定時間在4~24 h之間,長時間固定會影響抗原決定簇的暴露,且容易出現自發(fā)熒光及非特異性染色。
②二甲苯脫蠟時間不宜長,1~3 h最佳,脫蠟過度會導致組織發(fā)硬發(fā)脆;④抗原修復時,高壓時間過長,應適當縮短時間。
解決方法:①切片厚度視組織而定,如同淋巴結、腎等組織需要比較?。ú怀^3 um),腦組織需要較厚(尤其是取新鮮標本冰凍制片時),6-8 um最佳,冰凍可切至10 um;其他一般如胃腸道、肝膽等等組織,2-4 um為宜,太厚易導致細胞重疊,影響觀察;②切片角度和刀片新舊程度對切片效果的影響較大,切片角度視切片機型號而異,新刀片更易切出完好的切片;③撈片要求一步到位,輕夾輕放,達到無皺折、無氣泡,水溫控制在40℃左右;④粘片時玻片可用多聚賴氨酸或蛋白甘油處理,或選擇防脫片,以增強粘附性;⑤烘干溫度為50℃,時間為12~24 h。
解決方法:①切片厚度不一致,需更換刀片,調整切片機狀態(tài);②試劑配制未混勻,導致局部濃度不一致,應將試劑充分混勻后滴加;④脫蠟不全,可更換脫蠟劑或延長脫蠟時間。
解決方法:①組織邊緣與玻片粘貼不牢,邊緣組織松脫漂浮在液體中,每次清洗不易將組織下面試劑洗盡。玻片清洗干凈后應用APES或多聚賴氨酸處理,并確保組織切片盡量薄,盡量避免選用壞死較多的組織;②切片上滴加的試劑未覆蓋均勻或未覆蓋到全部組織,邊緣的試劑少,容易變干,導致邊緣的試劑濃度比中心區(qū)域的高,而使得染色結果偏深。滴加試劑時要均勻且充分覆蓋到全部組織,為防止邊緣水分減少,滴加試劑時可以適當超出組織邊緣2 mm左右,保證組織部分覆蓋均勻。用組化筆畫圈時,距組織邊緣3-4 mm為宜,避免油劑對實驗結果的影響。
②固定不充分導致組織自溶,損壞,適當延長固定時間;③根據組織大小,提高固定劑與組織的比例,切取小組織塊,浸泡固定更加充分;④固定劑使用不當,根據目標蛋白和樣品組織性質選擇不同固定劑;⑤優(yōu)化固定條件,包括濃度、溫度、固定時間等;⑥抗原擴散,嘗試使用交聯固定劑而不是有機(醇類)固定劑。
解決方法:①不當的固定方式或固定時溫度過高,影響待測抗原的數量和質量,應根據組織選擇更適宜的固定方式及溫度。
解決方法:①固定液封閉了抗體識別表位,應縮短固定時間,增加抗原修復;②靶蛋白含量低,建議增加抗體使用量或利用放大步驟來放大信號;③靶蛋白為膜蛋白而表位可能因為滲透作用被破壞或移除,建議將緩沖液中的滲透試劑減少或移除。④組織較厚,建議做細胞破膜,以便抗體順利進入胞內與相應抗原結合。